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Lonza Nucleofector 384孔高通量細胞核轉染系統
——基因治療研究、藥物靶點高效篩選


 

北京澤平代理的德國進口Lonza Nucleofector 384孔高通量細胞核轉染系統(384-well Nucleofector System,原HT Nucleofector System,簡稱384孔核轉儀),具備Nucleofector技術快速處理、高轉染效率、高細胞活力的特點,每孔可設置不同的轉染程序,實現1~384樣品同時轉染,滿足CRISPR/Cas9基因編輯篩選、藥物靶點研究等高通量轉染的需求。

Lonza Nucleofector 384孔高通量細胞核轉染系統代理 北京澤平

2021年(nian)是Lonza Nucleofector高(gao)效細胞(bao)核轉染(ran)技(ji)術面世20周年(nian),作為(wei)非病毒(du)轉染(ran)方(fang)法(fa),大(da)量(liang)成功用(yong)于原代細胞(bao)、干(gan)細胞(bao)、神(shen)經元、難轉染(ran)細胞(bao)系中,文(wen)獻引(yin)用(yong)超過10,000篇(pian),多年(nian)來幫(bang)助(zhu)推動基因治療(liao)(liao)(liao)研(yan)究(jiu)、細胞(bao)治療(liao)(liao)(liao)研(yan)究(jiu)、免疫治療(liao)(liao)(liao)研(yan)究(jiu)的發展。

Lonza 384孔核轉儀,作為獨立的轉染平臺,由一個轉染384孔板的工作模塊、一個提供高壓脈沖的電源模塊、一個用于設置轉染參數的PC端操作軟件組成,耗材使用配套384孔電轉板nucleocuvete plate(24×16),每孔為20μL體系,每一個孔可分別設置完全不同的轉染程序,1min內完成全部384個不同樣本的快速轉染,同時具備高轉染效率、高通量、高重復性的特點,廣泛應用于陣列cDNA、RNAi、CRISPR文庫篩選中,成為藥物靶點、疾病機理研究的高效研發工具。

Lonza Nucleofector 384孔高通量細胞核轉染系統電源模塊工作模塊 北京澤平
Lonza Nucleofector 384孔轉染試劑盒 北京澤平

 

Lonza 384孔核轉儀優勢

1、高效轉染——采(cai)用(yong)Lonza專利Nucleofector細(xi)(xi)(xi)胞核(he)轉(zhuan)染技術,通過針(zhen)對每(mei)種細(xi)(xi)(xi)胞特殊優化的(de)電轉(zhuan)染程序(xu),大幅提(ti)(ti)升轉(zhuan)染效率,通過細(xi)(xi)(xi)胞特異(yi)性轉(zhuan)染液(ye)、無鋁(lv)離子毒(du)害(hai)的(de)新型(xing)聚(ju)合物電極,構建溫和轉(zhuan)染環境,提(ti)(ti)升轉(zhuan)染效率的(de)同時,提(ti)(ti)高轉(zhuan)染后細(xi)(xi)(xi)胞活力,維持細(xi)(xi)(xi)胞功能完(wan)整。

2、高通量,快速處理——每(mei)1個孔(kong)均可(ke)設置特定轉(zhuan)染(ran)程(cheng)序,可(ke)同時運行384個不同程(cheng)序,實(shi)現真正的(de)高通量轉(zhuan)染(ran)。1min內可(ke)完成1個384孔(kong)板的(de)滿板轉(zhuan)染(ran),可(ke)旋轉(zhuan)操作盤能夠處理(li)2個384孔(kong)板,實(shi)現快速、規模化處理(li)。

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3、低成本——每(mei)孔轉(zhuan)染細(xi)胞(bao)數量(liang)2E4~1E6個,可用較低的細(xi)胞(bao)和(he)耗材(cai)成本進(jin)行高通(tong)量(liang)的實驗優化。

4、線性放大規模——使用384孔核轉儀摸(mo)索的(de)優化轉染條件,可直接用于(yu)Lonza其他大體積(ji)核轉儀模塊中,線(xian)性放大實驗成果。

5、自動化處理——384孔(kong)電轉板符合SBS標準,可(ke)無縫對接(jie)自動化(hua)液體處理系(xi)統,提高實驗整體效率,減(jian)少人為誤差。 

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引用文獻

1. Gordon, D., Hiatt, J., Bouhaddou, M. et al. Comparative host-coronavirus protein interaction networks reveal pan-viral disease mechanisms. Science, 370, 6521 (2020). //www.science.org/doi/10.1126/science.abe9403#F5

2. Mac Kain, A., Maarifi, G., Aicher, S. et al. 2021. Identification of DAXX As A Restriction Factor Of SARS-CoV-2 Through A CRISPR/Cas9 Screen. //www.biorxiv.org/content/10.1101/2021.05.06.442916v1.full

3. Obara, E.A.A., Aguilar-Morante, D., Rasmussen, R.D. et al. SPT6-driven error-free DNA repair safeguards genomic stability of glioblastoma cancer stem-like cells. Nat Commun 11, 4709 (2020). //doi.org/10.1038/s41467-020-18549-8

4. Monkley, S., Overed-Sayer, C., Parfrey, H. et al. Sensitization of the UPR by loss of PPP1R15A promotes fibrosis and senescence in IPF. Sci Rep 11, 21584 (2021). //doi.org/10.1038/s41598-021-00769-7

5. Tong, Y., J?rgensen, T.S., Whitford, C.M. et al. A versatile genetic engineering toolkit for E. coli based on CRISPR-prime editing. Nat Commun 12, 5206 (2021). //doi.org/10.1038/s41467-021-25541-3

 

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