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Lonza Nucleofector 2b單孔細胞核轉染系統
——原代細胞、難轉染細胞系高效電轉儀

 
北京澤平代理的德國進口Lonza Nucleofector 2b單孔細胞核轉染系統（原Amaxa Nucleofector II/2b Device，又稱Lonza 2b細胞核轉儀、Lonza 2b細胞電轉儀）， 作為全球知名的高效基因電轉儀，其利用傳統電穿孔原理，結合細胞特異性電轉染液，可以將包括DNA、RNA、質粒、多肽、蛋白質、核糖核蛋白復合體RNP等轉入細胞質中，并穿過核膜直接進入細胞核中，實現高效轉染，稱為Nucleofector核轉染技術(Nucleofection)。其中質粒DNA轉染效率最高達到90%、寡核苷酸如siRNA轉染效率最高達到99%。

北京澤平科技，2009年-2024年連續16年作為Lonza中國地區一級代理商，長期穩定銷售Lonza核轉儀及核轉試劑盒、人原代細胞和原代培養基、X-VIVO無血清培養基、GS基因表達系統用CHO細胞培養基、內毒素檢測試劑盒和檢測儀器、支原體檢測試劑盒和儀器、瓊脂糖和閃膠、COCOON全自動細胞生產平臺、MODA實驗室信息管理系統等全系列產品，提供全套售前、售后服務，在國內眾多大學院校、研究機構師生、以及企業研發人員中獲得了良好口碑，并于2019年獲得LONZA亞太地區優秀經銷商獎。

①Lonza官方授權，完整進口手續，正品保證
②專業技術支持團隊，中文咨詢服務，解決實驗問題
③核轉儀現場裝機、演示Demo、培訓
④完善銷售流程，售前、售后一條龍服務
⑤中國地區一級代理商，優勢價格，大量現貨銷售


 
Lonza 2b電轉儀自2001年上市以來，廣泛用于包括干細胞、神經細胞、T淋巴細胞在內的動物原代細胞和難轉染的細胞系，以及細菌、外泌體轉染中，助力CAR-T、CAR-NK、CRISPR/Cas9基因編輯、IPS重編程、RNA干擾、外泌體遞送等多種前沿研究，全球發表文章超過14,000篇。



2b電轉儀不依賴于有絲分|裂，尤其適合不分化細胞，如靜止的T淋巴細胞、神經細胞等，最快2小時可觀察到蛋白表達。相比脂質體轉染、病毒轉導、傳統電穿孔儀，Lonza 2b電轉儀操作簡單，重復性高，在原代細胞和細胞系中實現更高轉染效率、更高細胞活率、更快基因表達，加快推進實驗進程。


Fig. Primary NHDF-neo cells were transfected with labeled plasmid DNA encoding GFP, fixed after 2h in 3.5%PFA and analyzed by confocal microscopy.
 

 

 

 

Lonza Nucleofector核轉染技術依托電轉儀設備、電轉染試劑盒、全球共享數據庫三方面技術和資源優勢，實現高效、靈活、方便的細胞轉染體驗。



①2b電轉儀——內置針對不同(tong)細胞類型優化的電(dian)脈(mo)沖程序，無(wu)需人(ren)工設置電(dian)壓電(dian)流等電(dian)擊參(can)數，無(wu)需摸索轉染條件，選定程序一(yi)鍵操(cao)作(zuo)，實驗過程簡(jian)單方(fang)便。

②電轉染試劑盒——Lonza 2b電(dian)轉(zhuan)(zhuan)染(ran)(ran)試(shi)劑盒(he)由(you)電(dian)極杯(bei)（電(dian)轉(zhuan)(zhuan)杯(bei)）、電(dian)轉(zhuan)(zhuan)染(ran)(ran)緩沖液、補充劑、pmaxGFP陽性對照(zhao)質(zhi)粒、巴氏吸管組成(cheng)。其電(dian)轉(zhuan)(zhuan)緩沖液配方根據(ju)原代細(xi)(xi)胞(bao)、細(xi)(xi)胞(bao)系類型(xing)單獨優化(hua)，每(mei)種(zhong)試(shi)劑盒(he)用于不(bu)同細(xi)(xi)胞(bao)類型(xing)，以提高轉(zhuan)(zhuan)染(ran)(ran)效率、轉(zhuan)(zhuan)染(ran)(ran)后(hou)細(xi)(xi)胞(bao)活率，支持(chi)多種(zhong)底(di)物共轉(zhuan)(zhuan)染(ran)(ran)，實(shi)驗結果具備高重復性。

③全球共享數據庫——線上實時數據庫（//knowledge.lonza.com），可查詢超過759種細胞的轉染全流程數據，包括細胞來源、傳代、培養條件、轉染程序選擇和操作技巧、轉染后培養條件、歷史轉染結果等，資源不斷更新，豐富便捷的數據參考，提高實驗效率，幫助科研人員專注于研究本身。

 

 

 

 
Lonza 2b細胞電轉儀轉染操作流程



 


 



Lonza 2b電轉儀參數
 

 

 

 
 
引用文獻

1. Korbinian N. Kropp, et al.(2023) Targeting the melanoma-associated antigen CSPG4 with HLA-C*07:01-restricted T-cell receptors. //doi.org/10.3389/fimmu.2023.1245559
2. Stephan Riesenberg, et al.(2023) Efficient high-precision homology-directed repair-dependent genome editing by HDRobust. //doi.org/10.1038/s41592-023-01949-1
3. Kui Zhao, et al.(2023) Generation of an NSD2-deficient human embryonic stem cell line using CRISPR/Cas9 technology. //doi.org/10.1016/j.scr.2023.103255
4. Meiling Jiang, et al.(2023) Generation of a homozygous RANGRF knockout hiPSC line by CRISPR/Cas9 system. //doi.org/10.1016/j.scr.2023.103136
5. Xingjie Ren, et al.(2023) Efficient bi-allelic tagging in human induced pluripotent stem cells using CRISPR. //doi.org/10.1016/j.xpro.2023.102084
6. Ittetsu Nakajima, et al.(2023) In Vivo Delivery of Therapeutic Molecules by Transplantation of Genome-Edited Induced Pluripotent Stem Cells. //doi.org/10.1177/09636897231173734
7. Shidong Qiu, et al.(2023) Generation of the induced pluripotent stem cell line SFMUi001-A from a patient with usher syndrome type 2 caused by biallelic variants in the USH2A gene. //doi.org/10.1016/j.scr.2023.103101
8. Chiami Moyama, et al.(2023) Myb Repression Mediates Stat5b-knockdown-induced Apoptosis and Inhibits Proliferation of Glioblastoma Stem Cells. //doi.org/10.21873/cgp.20374
9. Saito, M.K., et al.(2023) A disease-specific iPS cell resource for studying rare and intractable diseases.  //doi.org/10.1186/s41232-023-00294-2
10. Joseph T. Smith, et al.(2023) Developmental dynamics of mitochondrial mRNA abundance and editing reveal roles for temperature and the differentiation-repressive kinase RDK1 in cytochrome oxidase subunit II mRNA editing. //doi.org/10.1128/mbio.01854-23

 


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